旗下实验室资质
CMA计量认证证书
CNAS实验室认可证书
ISO资质
高新技术企业资质
技术概述
大鼠活体荧光成像测试是一种利用高灵敏度光学成像设备，对活体大鼠体内的荧光信号进行无损、实时、动态观测的检测技术。其基本原理是将荧光蛋白、荧光染料、荧光探针或荧光纳米材料等荧光标记物通过注射等方式导入大鼠体内，或对特定细胞进行荧光标记后植入大鼠体内，荧光标记物在特定波长激发光的照射下发射荧光，由配备高灵敏度制冷 CCD 相机的小动物活体成像系统捕捉荧光信号，从而实现在体水平上对标记物的分布、代谢、富集和清除过程进行定性定位与半定量分析。
与传统的离体检测方法相比，大鼠活体荧光成像测试具有显著优势：其一，无需处死动物即可获得体内信息，同一只大鼠可在不同时间点重复成像，实现纵向动态监测，大幅减少动物使用数量，符合动物伦理"3R"原则；其二，检测灵敏度高，可检测到皮摩尔级甚至更低浓度的荧光信号；其三，操作相对简便，成像速度快，通量高，可同时对多只大鼠进行成像；其四，成像结果直观，图像数据便于统计分析与展示，广泛应用于药物研发、纳米医学、肿瘤生物学等多个领域。
需要注意的是，荧光成像的信号强度除了与标记物浓度相关外，还受激发光强度、曝光时间、荧光量子产率、组织穿透深度、皮肤毛发背景干扰等多种因素影响，因此在大鼠活体荧光成像测试中需要合理设计实验方案、设置对照并规范操作流程，以保证数据的准确性与可重复性。
检测样品
大鼠活体荧光成像测试所涉及的样品主要包括实验动物和待检测的荧光标记物两大类，常见样品类型如下：
- 各类实验大鼠：包括正常大鼠以及肿瘤模型、炎症模型、感染模型、糖尿病模型、缺血模型等疾病模型大鼠；
- 荧光标记细胞：如荧光蛋白标记的肿瘤细胞、干细胞、免疫细胞等，用于研究细胞在体内的存活、迁移、增殖与归巢行为；
- 荧光染料与荧光探针：如吲哚菁绿（ICG）、近红外荧光染料标记的探针分子，用于血管成像、淋巴成像、酶活性检测等；
- 荧光纳米材料：如荧光标记或自发光的纳米粒、脂质体、聚合物胶束、外泌体、量子点等，用于评价纳米载体的体内行为；
- 荧光标记的药物或药物载体：将小分子药物、多肽、蛋白或抗体进行荧光标记，考察其在大鼠体内的分布与靶向性；
- 离体验证样品：成像结束后采集的各大器官、组织、血液、排泄物等，用于离体荧光成像与定量验证。
检测项目
依托小动物活体荧光成像系统，可开展的大鼠活体荧光成像测试项目涵盖多个层面，主要包括：
- 活体荧光信号强度与分布检测：观测荧光标记物在大鼠全身或特定部位的分布情况；
- 荧光标记细胞体内示踪：监测移植细胞在大鼠体内的存活、迁移、增殖与分化定位；
- 纳米药物生物分布研究：评价荧光标记纳米制剂在各大脏器中的分布与靶向富集效率；
- 药物体内代谢与清除动力学分析：通过不同时间点连续成像，考察荧光标记物的血液半衰期、蓄积与排泄规律；
- 肿瘤生长与转移监测：利用荧光标记肿瘤细胞，纵向监测移植瘤的生长曲线与转移灶形成情况；
- 炎症与感染病灶定位：采用炎症靶向荧光探针，对炎症部位或感染病灶进行在体荧光定位；
- 淋巴结与血管成像：通过近红外荧光染料实现前哨淋巴结示踪及血管结构成像；
- 离体器官荧光成像验证：对主要脏器进行离体成像与荧光半定量分析，验证在体结果；
- 荧光信号图像处理与数据分析：包括感兴趣区域（ROI）圈选、荧光强度半定量、分布热图绘制等。
检测方法
大鼠活体荧光成像测试一般按照标准化的操作流程进行，以保证结果的可靠性与可比性。典型测试流程如下：
- 实验方案设计：根据检测目的确定荧光标记物种类、给药途径、给药剂量、成像时间点及分组方案，设置阴性对照与空白对照；
- 动物准备：测试前对大鼠成像部位进行剃毛或使用脱毛剂处理，以减少毛发对激发光和荧光信号的遮挡与散射；
- 麻醉固定：采用异氟烷吸入麻醉或注射麻醉的方式使大鼠处于麻醉状态，并将其固定于恒温成像平台上，保持体温稳定；
- 成像参数设置：根据荧光标记物的激发与发射光谱特性，选择合适的激发滤光片与发射滤光片，设定曝光时间、光圈大小、binning 值及视野范围等参数；
- 图像采集：在预设时间点对大鼠进行荧光成像与明场成像，获取荧光信号图像与解剖定位参考图像；
- 数据处理：利用成像系统配套软件进行背景扣除、伪彩叠加、ROI 圈选与荧光强度分析，计算靶与非靶比值、靶/背景比值等指标；
- 离体验证：成像结束后根据需要采集血液、脏器与组织样品，进行离体荧光成像、组织冰冻切片荧光观察或体外荧光定量，对在体结果进行验证与补充；
- 报告出具：整理图像与分析数据，形成包含成像条件、代表性图像、荧光强度定量结果及结果解读的测试报告。
在具体实施过程中，技术人员会根据荧光标记物的光谱特性、大鼠品系与模型特点对上述流程进行适当优化，例如调整激发光功率、增加成像时间点密度或采用背景荧光扣除策略，以提高检测的灵敏度与准确性。
检测仪器
大鼠活体荧光成像测试依托专业的成像平台开展，主要仪器设备包括：
- 小动物活体荧光成像系统：配备高灵敏度制冷 CCD 相机、多功能激发光源及滤光片轮转系统，可实现多通道荧光成像；
- 气体麻醉系统：包括异氟烷挥发罐与麻醉诱导箱，用于大鼠的诱导麻醉与维持麻醉；
- 恒温成像平台：维持麻醉状态下大鼠的体温，避免低温引起的生理状态改变影响成像结果；
- 图像采集与分析软件：支持荧光信号伪彩显示、多通道叠加、ROI 分析与荧光半定量计算；
- 离体荧光成像系统：用于器官与组织的离体验证成像；
- 荧光显微镜与组织切片系统：用于组织冰冻切片的荧光观察，明确荧光标记物的细胞与组织定位；
- 多功能荧光分光光度计与酶标仪：用于血液、组织匀浆等样品中荧光强度的体外定量；
- 动物护理与操作设备：包括大鼠固定板、剃毛器、体温计、眼科剪刀镊子等辅助器械。
应用领域
大鼠活体荧光成像测试在生命科学与医药研发领域应用广泛，主要包括：
- 抗肿瘤药物研发：荧光标记肿瘤细胞构建模型，评价抗肿瘤药物的抑瘤效果与转移抑制作用；
- 纳米药物递送系统研究：考察纳米粒、脂质体、外泌体等载体的体内分布、靶向富集与滞留特性，指导制剂处方优化；
- 干细胞与细胞治疗研究：示踪移植干细胞或免疫细胞在大鼠体内的存活、迁移与归巢情况；
- 感染性疾病研究：利用荧光标记病原体或感染靶向探针，动态监测感染进程与药物疗效；
- 药物代谢与药代动力学筛选：通过荧光标记策略快速评估候选化合物的体内分布与清除趋势；
- 炎症与免疫研究：采用活化型荧光探针检测炎症部位蛋白酶活性或活性氧水平；
- 光动力诊断与治疗研究：评价光敏剂在肿瘤组织的富集与清除规律，确定最佳光照时间窗；
- 生物材料与医疗器械安全性评价：观察植入材料在体内的降解、迁移与蓄积情况；
- 手术导航与淋巴示踪研究：基于近红外荧光的淋巴结显像，为手术方案的制定提供依据。
常见问题
问题一：大鼠活体荧光成像测试的检测周期是多久？
大鼠活体荧光成像测试的检测周期一般为7-15个工作日。具体周期会受到多方面因素的影响，包括检测项目的数量、成像时间点的设置密度、样品与动物的数量、荧光标记方案的复杂程度、是否需要开展离体器官验证与组织切片分析等。如果实验设计包含多时间点纵向动态监测，或者需要进行细胞标记、模型制备等前期工作，整体周期会相应延长。对于时间要求较为紧迫的项目，可与实验室沟通安排加急处理，在保证数据质量的前提下尽量压缩检测周期。
问题二：大鼠活体荧光成像测试的检测价格是多少？
大鼠活体荧光成像测试的价格受多种因素综合影响，无法一概而论。主要影响因素包括：检测项目的具体内容与数量、荧光标记物的类型与标记方案、所用动物模型的种类与数量、成像时间点的设置、是否需要离体器官成像及组织切片验证、数据分析的深度要求，以及检测周期的缓急程度等。不同实验方案之间的工作量与技术难度差异较大，费用也会随之不同。如需了解具体报价，建议提前与技术人员沟通实验需求，提供详细的检测背景与方案设想，获取针对性的评估与报价信息。
问题三：大鼠活体荧光成像测试测试需要什么资质？
我们旗下拥有CMA和CNAS资质，检测能力范围覆盖多项生物学检测与成像分析相关项目，可以为大鼠活体荧光成像测试提供规范的技术支撑。同时，我们组建了由经验丰富的实验人员组成的专业团队，熟悉动物实验操作规范、荧光成像流程与数据分析方法，并配备了小动物活体荧光成像系统、气体麻醉系统、离体成像与组织分析设备等完善的仪器平台，能够保障测试过程的规范性与结果的可靠性。
问题四：大鼠活体荧光成像测试前需要做哪些准备工作？
测试前的准备工作主要包括几个方面：首先需要明确检测目的与实验方案，确定荧光标记物种类、给药途径、剂量以及成像时间点；其次需要对大鼠成像部位进行剃毛或脱毛处理，因为毛发会强烈散射和吸收激发光与荧光信号，显著降低成像质量；再次需要确认大鼠的健康状态与模型建立情况，避免疾病状态不稳定影响数据一致性；如果涉及荧光标记细胞，还需要提前完成细胞培养、荧光标记与活性验证。此外，建议在实验开展前与技术人员充分沟通方案细节，以提高测试效率。
问题五：大鼠活体荧光成像测试常用的荧光标记物有哪些？
常用荧光标记物主要包括几大类：一是荧光蛋白类，如绿色荧光蛋白（GFP）、红色荧光蛋白（mCherry）等，多用于标记肿瘤细胞或干细胞；二是有机荧光染料类，如吲哚菁绿（ICG）、Cy5.5、Cy7等，其中近红外染料因组织穿透深、自发荧光干扰小而应用广泛；三是荧光纳米材料，如量子点、上转换纳米粒等；四是活化型荧光探针，可在特定酶活性或微环境条件下被激活产生信号，用于炎症、肿瘤等病灶的特异性检测。选择时需要综合考虑荧光波长、量子产率、组织穿透深度、生物相容性及与成像系统滤光片的匹配性。
问题六：大鼠活体荧光成像测试过程中大鼠需要麻醉吗？
需要。成像过程中大鼠必须处于麻醉状态，以保证其保持固定体位，避免运动伪影对图像质量的影响。通常采用异氟烷吸入麻醉方式，麻醉深度易于调控，大鼠苏醒迅速，适合多时间点重复成像；也可根据实验需要选用注射麻醉。成像过程中会将大鼠置于恒温平台上，维持其体温稳定，防止麻醉引起体温下降影响生理状态与荧光信号。整体操作由经过培训的人员执行，严格控制麻醉剂量与时长，保障动物安全与实验顺利进行。
问题七：如何降低背景荧光对大鼠活体荧光成像测试结果的干扰？
背景荧光干扰主要来源于大鼠皮肤、毛发、饲料中的叶绿素成分以及垫料等自发荧光。可采取多种措施降低干扰：测试前对成像部位充分剃毛或脱毛；选用近红外波段的荧光标记物，避开组织的自发荧光高发区域；喂食低叶绿素饲料并提前更换无荧光干扰的垫料；成像时设置未标记的对照动物以扣除背景信号；数据处理时采用背景扣除与信号归一化方法。通过以上手段，可以显著提高信噪比，获得更加准确可靠的荧光成像结果。
