疼痛动物模型检测

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疼痛动物模型检测范围 疼痛动物模型检测主要针对急性疼痛、慢性炎症性疼痛及神经病理性疼痛三大类。常用动物包括小鼠、大鼠、豚鼠和兔，模型构建方法涵盖化学刺激（如福尔马林、乙酸）、物理刺激（热/冷板、机械压力）、神经损伤（坐骨神经结扎、脊神经压迫）以及炎症诱导（完全弗氏佐剂注射）等。检测范围覆盖疼痛行为学、生理生化指标、神经电信号及组织病理学变化。

检测项目

1. 行为学测试：
   • 热刺激反应（热板法、甩尾实验）
   • 机械痛阈（von Frey纤维丝、压力痛阈测定）
   • 冷痛敏感（冷板实验、丙酮刺激）
   • 自发疼痛行为（舔足、抬腿次数）
2. 生理生化指标：
   • 血清炎症因子（IL-6、TNF-α、IL-1β）
   • 脊髓背角c-Fos蛋白表达
   • 外周血或组织P物质、缓激肽水平
3. 神经电生理：
   • 坐骨神经传导速度
   • 脊髓背角神经元放电频率
4. 组织病理学：
   • 神经纤维脱髓鞘程度（Luxol Fast Blue染色）
   • 脊髓胶质细胞活化（GFAP、Iba1免疫组化）

检测仪器

1. 行为学设备：
   • 热板仪（温度控制精度±0.1℃）
   • 电子von Frey测痛仪（力值范围0.1~50g）
   • 动态/静态冷热板装置（温控范围0~60℃）
   • 视频追踪系统（EthoVision XT）
2. 生化分析仪器：
   • 酶标仪（ELISA检测，波长450nm）
   • 实时荧光定量PCR仪（检测基因表达）
   • 高效液相色谱仪（HPLC，分析神经递质浓度）
3. 电生理设备：
   • 多通道生理信号采集系统（PowerLab）
   • 微电极阵列（记录脊髓神经元活动）
4. 影像与病理设备：
   • 激光共聚焦显微镜（观察免疫荧光标记）
   • 石蜡切片机（组织切片厚度5~10μm）
   • 小动物活体成像系统（检测炎症区域发光信号）

检测方法

1. 行为学测试流程：
   • 热板法：动物置于55℃金属板，记录后足抬离或舔舐的潜伏期（≤20秒截止防灼伤）。
   • von Frey纤维丝：逐级施压足底，以50%缩足阈值（PWT）为痛敏指标。
   • 福尔马林试验：足底注射5%福尔马林50μL，分两阶段（0-5分钟急性期，15-60分钟炎症期）记录舔足时长。
2. 生化指标检测：
   • ELISA法：取血清或脊髓组织匀浆，按试剂盒步骤测定炎症因子浓度。
   • Western Blot：裂解脊髓组织提取蛋白，检测c-Fos、TRPV1通道表达量。
3. 电生理操作：
   • 神经传导速度：麻醉后暴露坐骨神经，双电极记录刺激-响应时间差。
   • 脊髓神经元记录：微电极插入背角浅层，记录机械刺激诱发动作电位。
4. 组织病理学分析：
   • 免疫组化：石蜡切片脱蜡后，一抗孵育（GFAP 1:500），DAB显色观察胶质细胞增生。
   • 髓鞘染色：Luxol Fast Blue染色切片，光镜下评估脱髓鞘面积占比。

（注：所有实验需遵循动物伦理规范，麻醉与镇痛方案根据当地指南执行。）

注意：因业务调整，暂不接受个人委托测试望见谅。